免疫細胞化學染色實驗操作流程
1.固定:去除殘留液體,用1X PBST清洗接種在干凈玻片上的細胞3次,每次3min。在室溫下用新鮮配制的4%多聚甲醛固定15min。
2.1XPBST漂洗三次:去除固定液,1XPBST漂洗3次,每次5min。
3.透化:在1XPBST中加0.1% Triton X-100,孵育20分鐘以提高通透性。
4.1XPBST漂洗三次:去除殘留液體,1XPBST漂洗3次,每次5min。
5.封閉:去除殘留液體,在切片上加5% BSA或血清。確保血清與二抗來源于相同物種。然后在室溫下孵育20min。
6.孵育一抗:去除殘留液體,用適當稀釋比例的一抗覆蓋組織部位,4oC過夜孵育。
7.復(fù)溫:將切片從4oC移至室溫靜置約20min,不要立即沖洗切片。
8.1XPBST漂洗三次:去除殘留并浸泡在PBST中,在搖床中以40 RPM漂洗5 min,重復(fù)3次。
9.孵育熒光偶聯(lián)的二抗:去除殘留液體,用適當稀釋比例的二抗覆蓋組織部位,4℃避光孵育60 min。
10.1XPBST漂洗三次:去除殘留并浸泡在PBST中,在搖床中以40 RPM漂洗5 min,重復(fù)3次。
11.滴加50% PBS+50% 甘油于玻片上,立即置于顯微鏡下觀察。